Kit de prueba de ácido nucleico del sexo del loro (Método de sonda de fluorescencia por PCR)

Este producto debe empacarse con bolsas de hielo y enviarse a través de FedEx o UPS..
Llegará dentro 7-10 días. Los gastos de envío están incluidos en el precio del producto..

Introducción del producto：

Este kit de reactivos puede amplificar y detectar el gen conservado CHD-W en muestras como plumas., sangre, y tejidos de loros, determinando así su género. Introduciendo una referencia interna endógena, Los procesos de extracción y amplificación de ácidos nucleicos se pueden monitorear para garantizar la precisión de los resultados de la prueba..

Contenido del producto：

Condiciones de almacenaje：

Almacenar a -20 ℃, la vida útil es al menos 12 meses

Operación experimental：

1. preparación de la muestra (Área de preparación de muestras)

1.1 Requisitos de muestra：

Plumas: Recoger al menos 5 plumas del pecho, abdomen, o piernas (incluyendo la parte del eje de la pluma), y no utilice plumas que se desprenden naturalmente.

Sangre: Utilice EDTA como anticoagulante., no use heparina como anticoagulante. Se debe utilizar sangre entera fresca., o se puede almacenar a 2 ~ 8 ℃ por hasta 7 días, o almacenado a -20 ℃ por hasta 3 meses. Evite congelar y descongelar repetidamente tanto como sea posible..

Tejido: Tome tejido fresco de músculo u órgano. (Evite el uso de muestras con piel., tendones, o fascia que son difíciles de procesar) de no más de 100 mg. Prepare el homogeneizado de tejido utilizando 200-500 μl de agua esterilizada., y luego proceder con la preparación posterior de la muestra.

1.2 preparación de la muestra：

Consulte Three Lions Biotech “Kit de extracción rápida de ADN genómico animal (para PCR análisis)” manual (Número de pieza: DP202), u otros kits/métodos de extracción de ácidos nucleicos que cumplan los requisitos pertinentes, para extraer las muestras procesadas. Coloque la muestra de ácido nucleico extraída en una hielera e intente continuar con la prueba lo antes posible.. Se puede almacenar a 4°C hasta por 7 días o a -20°C hasta 6 meses.

2 . Preparación del sistema de reacción. (Área de reacción para agregar muestras.).

2.1 Saque n+2 tubos de reacción que contienen control positivo CW, control negativo CW, y la solución de reacción necesaria para el experimento. (n representa el número de muestras a analizar, más 1 control positivo, y 1 control negativo). Descongelar completamente los reactivos a temperatura ambiente., centrífuga para 10 segundos, y haga girar el líquido dentro de las paredes y tapas del tubo hasta el fondo del tubo.. Colóquelos en una hielera para su uso posterior..

2.2 Entonces, añadir 2μL de control negativo, ácido nucleico de muestra extraída, y control positivo CW a la solución de reacción en secuencia. Cerrar las tapas de los tubos, hacer registros adecuados, y asegúrese de que el volumen total de cada reacción sea de 25 μL. Mezclar bien el contenido., centrífuga para 10 segundos, y luego proceder con el experimento de amplificación en el instrumento de PCR.

3. amplificación por PCR (Área de amplificación y análisis de productos).

Predesnaturalización a 95°C para 3 minutos; Desnaturalización a 95°C para 10 segundos, Recocido y extensión a 58°C para 30 segundos, para 35 ciclos, recoger señal de fluorescencia a 58°C. El canal de fluorescencia 1 debe configurarse en FAM (gen CHD-W), y canal 2 debe configurarse en VIC/HEX (gen de referencia endógeno) (cuando se utiliza el instrumento de PCR cuantitativa de fluorescencia en tiempo real de la serie ABI, si necesario, Póngase en contacto con el fabricante con antelación o agregue el tinte de calibración ROX usted mismo.; de lo contrario, seguir el procedimiento normal).

4. Determinación del resultado

4.1 Si los valores Ct del control positivo tanto en el canal FAM como en el canal VIC/HEX son <28 y mostrar un “S”-curva de amplificación en forma, y el control negativo no tiene valor Ct o un valor Ct ≥35 y no “S”-curva de amplificación en forma, el resultado experimental es válido. De lo contrario, el experimento debe repetirse, y si la repetición del experimento aún no es válida, póngase en contacto con el personal técnico del fabricante..

4.2 El valor Ct de la muestra en el canal VIC/HEX debe ser ≤30 y mostrar un “S”-curva de amplificación en forma, indicando que la extracción y amplificación de la muestra son efectivas. Si no hay ningún valor de Ct o el valor de Ct es 30 < CT ≤ 35 en el canal VIC/HEX, Indica que la extracción de ácido nucleico de la muestra no cumple con el estándar o que existe una fuerte interferencia de inhibición. (como residuos de alcohol o desinfectantes, anticoagulantes, etc.) que inhibe la amplificación. Se recomienda reprocesar la muestra para la extracción y amplificación de ácidos nucleicos..

4.3 Después de que la detección en el canal VIC/HEX sea válida, la determinación en el canal FAM se realiza de la siguiente manera:

• Valor CT ≤ 30 y un “S”-Se observa una curva de amplificación formada., y la diferencia Ct entre los dos canales es menor que 5, se determina como positivo para el gen CHD-W, indicando que la muestra es de una mujer.
• Valor CT ≤ 30 y un “S”-Se observa una curva de amplificación formada., pero la diferencia Ct entre los dos canales es ≥ 5, o el valor Ct es 30 < Connecticut < 32, todos son considerados sospechosos, y se recomienda volver a realizar la prueba (se sugiere excluir primero “falso positivo” resultados causados ​​por la contaminación ambiental por aerosoles, y luego proceder con la extracción y prueba del ácido nucleico.). Si la nueva prueba en el canal FAM después de excluir la contaminación por aerosol muestra un valor Ct < 30 y una curva de amplificación clara, y la diferencia Ct entre los dos canales es menor que 5, se determina como positivo para el gen CHD-W; de lo contrario, se determina como negativo.
• Sin valor Ct o valor Ct ≥ 32 y no “S”-curva de amplificación en forma, se determina como negativo para el gen CHD-W, indicando que la muestra puede provenir de un hombre.

Precauciones：

1）Para prevenir la contaminación, El experimento debe realizarse estrictamente con operaciones particionadas.. Es preferible contar con aislamiento físico entre tabiques para evitar la contaminación cruzada causada por factores humanos.. Use batas de laboratorio y guantes de látex durante el experimento., y utilizar herramientas separadas en diferentes áreas. Cambie los guantes y batas de laboratorio según sea necesario.. Después de la PCR, no abra las tapas inmediatamente. Espere a que se enfríe lo suficiente antes de abrirlo para tomar muestras para minimizar la contaminación por aerosoles..

2）Descongelar los reactivos completamente antes de usarlos., pero evite congelar y descongelar repetidamente. Siga estrictamente las instrucciones para la preparación de reactivos., adición de muestra, y otros pasos. el banco de trabajo, centrífugo, pipetas, y otros instrumentos deben desinfectarse periódicamente con desinfectantes que contengan cloro, etanol, agentes de eliminación de contaminación de ácidos nucleicos, o lámparas ultravioleta.

3）Un resultado negativo no significa necesariamente que sea un hombre. Mutaciones desconocidas, mala calidad de la muestra, baja concentración, o la presencia de fuertes sustancias inhibidoras en la extracción de ácidos nucleicos. (pruebas) también puede conducir a “negativo” resultados. Este kit sólo se utiliza para la amplificación específica del gen CHD-W en loros.. Para otros productos, por favor consulte al fabricante.

4）Este producto es para un solo uso.. No congelar y descongelar repetidamente. Es sólo para fines de investigación científica y no debe utilizarse para diagnóstico clínico u otros fines..