메모: 테스트 전에 예측을 위해 2~3개의 서로 다른 샘플을 채취합니다..
운영장비: 분광 광도계
고양이 번호: BC1190년
크기: 50T/24S
구성요소:
시약 | 양 | 저장 | 준비 |
---|---|---|---|
용액 추출 | 30 밀리리터 × 1 | 4℃ | – |
시약 I | 분말× 2 | 4℃ | 추가하다 3.3 사용시 용해할 희석액의 mL. |
시약 II | 10 μL × 1 | 4℃ | 희석하다 2 μL 시약 II 및 10 사용 전 증류수 mL. |
시약 III | 60 밀리리터 × 1 | 4℃ | 50°C 수조에서 결정화된 바닥을 용해시킵니다.. 바닥이 결정화 상태로 남아 있으면 상층액을 사용하십시오.. |
시약 IV | 30 밀리리터 × 1 | 4℃ | – |
시약 V | 10 밀리리터 × 1 | 4℃ | – |
기준 | 분말× 1 | 4℃ | 추가하다 0.405 mL의 증류수를 10 환원된 글루타티온 mg (GSH) 사용될 때. |
희석제 | 20 밀리리터 × 1 | 4℃ | – |
제품 설명:
- 글루타티온 퍼옥시다제 (GPX), GSH-Px 또는 GPX라고도 함, 신체에서 널리 발견되는 중요한 퍼옥시다제 효소입니다..
- GPX는 환원된 글루타티온의 전환을 촉매하는 데 중요한 역할을 합니다. (GSH) 산화된 글루타티온으로 (GSSG) 독성 과산화수소를 무독성 수산기 화합물로 감소시키는 데.
- GPX의 효소 작용은 과산화수소에 의한 GSH의 산화를 포함합니다, 그 결과 GSSG가 생산되었습니다..
- GSH는 DTNB와 반응하여 다음과 같은 특징적인 흡수 피크를 갖는 화합물을 형성합니다. 412 nm.
- 흡광도 감소 412 nm은 GPX 활동의 지표 역할을 합니다..
필요하지만 제공되지 않는 시약 및 장비:
분광 광도계, 균형, 테이블 원심분리기, 1 mL 유리 큐벳, 모르타르/균질화기, EP 튜브.
절차
나. 샘플 준비:
조직:
일치율 조직 중량 (g): 용액 추출 (밀리리터)=1:5~10 (추출액 1mL에 조직 0.05g 권장), 얼음 욕조에서 균질화. 원심분리기 5000 4℃에서 rpm 10 분, 상층액을 취하다, 테스트를 위해 얼음 위에 올려 놓으세요. (상층액이 맑지 않은 경우, 원심분리기 3 분).
박테리아 또는 세포
세포의 양 (104): 용액 추출 (밀리리터): 500~1000:1 (에 추출용액 1mL를 첨가한다. 5 백만개의 세포), 세포를 파괴하기 위해 얼음 욕조를 갖춘 초음파(300여,3에스, 간격 7초,총 시간 3 분). 원심분리 5000 4℃에서 rpm 10 분, 상등액을 채취하여 얼음 위에 올려 놓고 시험한다. (상층액이 맑지 않은 경우, 원심분리기 3 분).
혈청 샘플: 직접 감지
II. 결정 절차:
- 분광 광도계를 예열하십시오. 30 분, 파장을 조정하여 412 nm, 증류수로 0을 설정하고.
- 표준 솔루션 20 μmol/mL를 희석하여 0.25 추출 용액을 사용한 μmol/mL. 표준 솔루션 100 μL이 혼합되어 있습니다. 400 시약 IV의 μL, 그리고 표준용액의 농도는 0.05 μmol/mL. 표준용액은 혼합용액을 사용하여 조제한다..
- 믹스 150 μL의 샘플 150 μLof 시약 I을 넣고 실온에 보관합니다. 5 분.
- 작업 테이블: (1.5 mL 원심분리관에 다음 시약을 차례로 넣습니다.).
시약 이름(μL) | 시험관 (티) | 컨트롤 튜브 (씨) |
샘플 상청액 | 100 | – |
시약 I | 100 | 100 |
예열 5 37℃에서 분 | ||
시약 II | 50 | 50 |
에 대한 반응 5 37℃에서 분 | ||
시약 III | 1000 | 1000 |
샘플 혼합물 | – | 100 |
원심분리기 4000 실온에서 rpm 5 몇 분 후 상등액을 EP 튜브에 넣습니다..
시약 이름(μL) | 시험관 (티) | 컨트롤 튜브 (씨) | 표준 튜브 (에스) | 블랙 튜브 (비) |
희석제 | – | – | – | 500 |
상청액 | 500 | 500 | – | – |
표준 혼합물 | – | – | 500 | – |
시약 IV | 500 | 500 | 500 | 500 |
시약 V | 125 | 125 | 125 | 125 |
잘 섞어. 그런 다음 실온에 두어 15 분, 흡광도 412 nm는 측정됩니다. 흡광도는 AT로 기록됩니다., 교류, 처럼, 그리고 AB, 각기. ΔAT = AC 계산 – 에, ΔAS= 그대로 – AB.
III. 계산:
억제율 계산 억제율 =(고양이)/(택시)×100%
가능한 멀리, 샘플의 억제율은 다음 범위 내에 있습니다. 30-70%, 그리고 가까울수록 50%, 정확할수록. 억제율이 이하인 경우 30% 또는 그 이상 70%, 일반적으로 복용량을 조정하고 다시 결정해야 합니다.. 억제율이 높을 경우, 샘플을 적절하게 희석해야 합니다.. 억제율이 낮은 경우, 농도가 높은 샘플을 다시 준비해야 합니다..
GPX 활동 계산
- 단백질 농도:
단위 정의: 효소 활성 1단위는 반응 시스템에서 분당 1nmol의 GSH 산화를 촉매하는 효소의 양으로 정의됩니다., 단백질 1mg당.
GPX (U/mg 프로트) =ΔAT ¼(ΔAS nn CS)×1000×VEV²(CPR×VSV)¤T=200×ΔAT¨ΔAS¨Cpr
- 샘플 중량
단위 정의: 효소 활성의 1단위는 산화를 촉매하는 효소의 양으로 정의됩니다. 1 반응 시스템에서 분당 GSH의 nmol, 샘플 1g당.
GPX (U/g 중량) =ΔAT ¼(ΔAS nn CS)×1000×VEV²(VSV²VTV×W)¤T=200×ΔAT¨ΔAS¨W
- 셀량
단위 정의: 효소 활성 1단위는 반응 시스템에서 분당 1nmol의 GSH 산화를 촉매하는 효소의 양으로 정의됩니다., 모든 104 세포.
GPX(U/104셀) =ΔAT ¼(ΔAS nn CS)×1000×VEV²(N×VSV²VTV)¤T=200×ΔAT¨ΔAS¨N
- 액체량:
단위 정의: 효소 활성의 1단위는 산화를 촉매하는 효소의 양으로 정의됩니다. 1 반응 시스템에서 분당 GSH의 nmol, 액체 1밀리리터마다.
GPX (U/mL)=ΔAT ¼(ΔAS nn CS)×1000×VEV²VS²T=200×ΔATnnΔAS.
CS: 표준 혼합물의 농도, 0.08 μmol/mL;
VEV: 효소 반응 시스템의 부피, 1.25밀리리터;
VSV: 시료 혼합물에 포함된 시료량, 0.1 밀리리터; VTV: 추출용액량, 1 밀리리터;
심폐소생술: 상층액 단백질 농도, mg/mL;
티: 반응 시간, 5 분;
N: 세포의 양, 수만의; 여: 샘플 중량, g;
1000: 1 μmol=1000nmol.
메모:
- 흡광도가 더 클 때 1.2, 추출액으로 희석한 후 시료를 결정하는 것이 좋습니다.
- 한 번에 너무 많은 샘플을 채취하지 않는 것이 좋습니다., 색상 개발에 너무 긴 테스트 시간의 영향을 피하기 위해, 결정이 그렇지 않을 수도 있습니다.
실험적 사례:
- 쥐의 간 0.1g을 섭취하세요., 추출용액 1mL를 첨가한다, 균질화하다, 그리고 갈기. 상층액을 취한다, 그것을 희석하다 40 타임스, 측정값에 따라 테스트합니다. AT=0.108을 계산합니다., 교류=0.303, AS=0.491AB=0.033,ΔAT=AC-AT=0.195 ΔAS= AS-AB=0.458, 샘플 중량에 따른 효소 활성 계산:
GPX (U/g 중량)=200×ΔAT²ΔAS²W×40(희석배율)=34061U/g.
- 포플러잎 1g을 섭취하세요., 추출용액 1mL를 첨가한다, 균질화하다, 그리고 갈기. AT=0.220 계산, 교류=0.318, AS=0.491, AB=0.033, ΔAT=AC-AT=0.098,ΔAS=AB-AB=0.458, 샘플 중량에 따른 효소 활성 계산:
GPX (U/g 중량)=200×ΔATΔASW=428U/g.
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